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Criterios de Evaluación y Acreditación de Laboratorios que llevan a cabo ensayos microbiológicos

GLP

El objetivo de este artículo es difundir algunos aspectos de los criterios específicos que tiene que cumplir un laboratorio que realiza ensayos microbiológicos, además de los requisitos generales de la Norma IRAM 301: vigente (equivalente a la Norma ISO/IEC 17025: vigente), para ser evaluado y acreditado por el OAA.

Instalaciones y Condiciones ambientales
Independientemente de los ensayos y las mediciones que se llevan a cabo en el Laboratorio debe existir un espacio adecuado e instalaciones apropiadas, para la realización de los ensayos y actividades de apoyo, y para las áreas auxiliares (vestuario, oficina, depósitos, archivos, etc.), cuya ubicación, diseño y distribución deben prevenir la contaminación cruzada, garantizar la protección del personal y lograr una efectiva separación entre áreas vecinas en las que se realicen actividades incompatibles.

Métodos de ensayo, validación de los métodos microbiológicos e incertidumbre de medición
Debido a su criticidad, se debe incluir como parte de los procedimientos de ensayo, la preparación de las muestras en relación con el alcance solicitado.

Validación de los métodos de ensayo
La extensión o amplitud de la validación dependerá del método y de su aplicación. Se debe elaborar un Protocolo y un Informe de verificación/validación, tomando como modelo lo dispuesto en el documento DC-LE-08, Guía para validación de métodos microbiológicos, el cual se puede descargar de www.oaa.org.ar. Tanto la verificación de la aplicabilidad como la validación debe ser hecha por personal competente y bajo la autoridad de un Responsable, quién además, firmará el informe de verificación/validación.

Incertidumbre de medición
Para todos los métodos, ya sean cualitativos o cuantitativos, el Laboratorio debe elaborar un procedimiento que contemple la estimación de la incertidumbre de medición, tomando como modelo lo dispuesto en el documento DC-LE-08 ya mencionado.

Equipos
Como parte de su sistema de calidad, el laboratorio debe: (a) documentar e implementar un programa de mantenimiento, calibración y verificación de funcionamiento de todos los equipos necesarios para llevar a cabo los ensayos dentro del alcance de la acreditación. Éste debe incluir los sistemas computarizados utilizados para la generación, almacenamiento y recuperación de datos; (b) ubicarlos debidamente, adoptando medidas para evitar la contaminación cruzada, por ejemplo, no moviendo los equipos del laboratorio entre las distintas áreas; (c) realizar su mantenimiento a intervalos especificados y mantener registros de todas las operaciones realizadas. En la norma ISO 7218, la guía EA - 4/10, Accreditation in Microbiological Laboratories, Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater (APHA) sección 9020 B, se facilitan directrices sobre el mantenimiento, calibración y monitoreo de los equipos utilizados en el laboratorio.

Calibración y verificación de equipos
Para todos los equipos e instrumentos que influyen directamente en los resultados de los ensayos, el Laboratorio debe calibrarlos, verificarlos y/ o validarlos antes de su uso y establecer en forma documentada, su aptitud metrológica para cumplir con las tolerancias especificadas en el método de ensayo. La frecuencia de las calibraciones y verificaciones debe establecerse en función del tipo, el uso y el funcionamiento de los equipos. El laboratorio puede establecer los intervalos entre sucesivas calibraciones/verificaciones de acuerdo a la historia previa de estos equipos, sin embargo debe demostrarlo mediante evidencias objetivas para asegurar la confianza en estos equipos.

El documento CE-LE-06 “Criterios específicos para la evaluación y acreditación de Laboratorios que llevan a cabo ensayos microbiológicos” describe las particularidades vinculadas a los distintos tipos de equipos: medios isotermos; heladeras, freezers, cámaras de almacenamiento en frío; pesas y balanzas; cabinas de flujo laminar y de seguridad biológica y material volumétrico.

Reactivos y medios de cultivo
Materiales utilizados en el laboratorio
El Laboratorio debe asegurar que la calidad e idoneidad de los reactivos, materiales e insumos y medios de cultivo utilizados sean apropiados para el método de ensayo. Para ello debe contar con procedimientos que incluya todo el proceso desde su selección, especificaciones de calidad, compra, evaluación de proveedores, recepción, verificaciones de su idoneidad para el uso, preparación, almacenamiento y utilización, hasta su disposición final. En dichos procedimientos debe:
    a) documentarse todas las formas de preparación y llevar registros. Por ejemplo, para medios de cultivo, se deben llevar registros de:
    • recepción, apertura del envase, caducidad, y condiciones de almacenamiento
    • todos los detalles pertinentes de cada lote de medio preparado. Estos registros deben incluir: el nombre del medio, número de lote, cantidad de cada uno de los ingredientes (en el caso de medios preparados en el laboratorio a partir de ingredientes básicos), pH, fecha de preparación, datos del proceso de esterilización y nombre del operador

    b) describirse el equipamiento necesario para su preparación y almacenamiento

    c) documentarse las precauciones de seguridad que deben observarse durante la preparación y el uso

    d) establecerse y documentarse los criterios de aceptación y rechazo en cuanto a las condiciones de almacenamiento. Para aquellos medios preparados, pero no utilizados inmediatamente, debe determinarse y verificarse su período de validez en las condiciones de conservación especificadas y deben estar etiquetados con el nombre del medio, fecha de preparación y vencimiento, si es aplicable.
    Cada lote de reactivo, materiales e insumos y medios de cultivo utilizado, debe ser verificado antes de su uso y se deben mantener registros de los controles realizados.
Control de pérdidas de volumen durante la esterilización
Cuando los volúmenes de los medios y diluyentes preparados son críticos, por ejemplo diluyentes, debe verificarse el volumen luego de la esterilización, para comprobar que no haya pérdidas significativas que afecten al ensayo. Este procedimiento debe estar documentado y se deben llevar registros. El Laboratorio debe establecer los intervalos para realizar estas verificaciones y fundamentar los criterios utilizados.

Etiquetado
Todos los reactivos, medios de cultivo, diluyentes y cualquier otro material o insumo utilizado en los ensayos deben estar adecuadamente etiquetados, de modo de asegurar su identificación y trazabilidad, por ejemplo y cuando aplique, respecto a su concentración, condiciones de conservación, fecha de preparación, fecha de caducidad, persona responsable de la preparación, esterilización, entre otras.

Calidad del agua
Deben establecerse las especificaciones de calidad para el agua utilizada para procesos críticos, por ejemplo en la preparación de reactivos, diluyentes y medios de cultivo. Estas deben basarse en parámetros físico-químicos y biológicos, tales como conductividad, pH, contaminación microbiana, presencia de trazas de metales, cloro residual, etc., que aseguren la ausencia de inhibidores que puedan afectar el crecimiento microbiano y de contaminación microbiana que afecte su idoneidad.

Material de vidrio
Debe documentarse el procedimiento para el lavado del material de vidrio utilizado en el laboratorio, para garantizar que esté libre de sustancias inhibidoras dejadas por detergentes, desinfectantes, reactivos, etc.

Materiales e insumos
El Laboratorio debe asegurar la calidad e idoneidad para su uso de todo el material de laboratorio utilizado en los ensayos, tales como placas de Petri, tubos de ensayo, recipientes y bolsas para muestras, espátulas, pipetas, puntas descartables para pipetas, equipos e insumos para filtración por membrana, etc. Para estos últimos se realizará el control de esterilidad y volumen para las unidades de filtración y el control de las membranas utilizadas.

Para todas las actividades descriptas en este ítem, se pueden adoptar las disposiciones de la guía EA - 4/10, Accreditation in Microbiological Laboratories, la ISO 7218: vigente; Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater (APHA) sección 9020 B; ISO 11133-1 e ISO 11133-2 vigentes, según apliquen.
BPL
Materiales de referencia
Cepas de referencia
Para demostrar trazabilidad, el laboratorio debe utilizar cepas de referencia de microorganismos obtenidos de una colección nacional o internacional reconocida. El Laboratorio debe tener una política y un procedimiento para la compra, manipulación, almacenamiento, conservación, mantenimiento y uso de las cepas de referencia. Se deben mantener registros.

Las cepas de referencia pueden ser subcultivadas una vez para obtener cepas de reserva, realizando en paralelo los controles de pureza y ensayos bioquímicos que sean necesarios.

Las cepas de reserva deben ser conservadas, utilizando técnicas apropiadas de manera de mantener las características deseadas. Estas cepas servirán para preparar las cepas de trabajo para el trabajo de rutina.

Las cepas de trabajo no deben ser subcultivadas para sustituir a las cepas de reserva. El Laboratorio debe definir en un procedimiento la preparación y verificación de las cepas de trabajo, estableciendo la frecuencia y tipo de controles que realizará para controlar las características deseadas, que deben incluir ensayos bioquímicos, serológicos y morfológicos.

Manipuleo de las muestras de ensayo
Recepción de las muestras
Debido a que la flora microbiana puede ser sensible a factores tales como temperatura o duración del almacenamiento y transporte, el Laboratorio debe:
    a) disponer de procedimientos para la recepción e identificación de las muestras, incluyendo los criterios para la aceptación de las mismas. La identificación debe ser unívoca y conservarse durante todo el ciclo de vida de la muestra en el laboratorio;

    b) registrar toda la información relevante y, en particular, lo siguiente: fecha y, cuando sea oportuno, hora de la llegada de la muestra; naturaleza, características, volumen/cantidad de la muestra, estado del envase que la contiene, estado de la muestra en el momento de su recepción y, cuando sea necesario, temperatura; características de la operación de muestreo (fecha de muestreo, condiciones de muestreo, etc.), cuando aplique. Si la muestra es insuficiente o se encuentra en mal estado por deterioro físico, temperatura inapropiada, envase roto o etiquetado defectuoso, el laboratorio debe consultar con el cliente antes de decidir si analiza o rechaza la muestra. En cualquier caso, debe indicar su estado en el informe del ensayo
Almacenamiento y manipulación de las muestras
Las muestras que se encuentren a la espera de ser analizadas deben almacenarse en condiciones adecuadas para reducir al mínimo cualquier modificación en la población microbiana presente.

También es esencial evitar la propagación de posibles contaminaciones debidas, por ejemplo al envase y etiquetado que pueden estar altamente contaminados. Para ello el laboratorio debe definir documentalmente la manipulación y las condiciones y tiempo máximo de almacenamiento de las muestras de modo de preservar la integridad de las mismas y cumplir con los requisitos de los métodos de ensayo. Se deben registrar las condiciones de almacenamiento.

La preparación de las muestras y porciones de ensayo realizado por el laboratorio inmediatamente antes del ensayo, se consideran parte del método de ensayo y debe efectuarse conforme a normas nacionales o internacionales, cuando existan, o a métodos internos validados.

Estos procedimientos deben diseñarse teniendo en cuenta la distribución heterogénea de los microorganismos (en la serie de normas ISO 6887, ISO 8261 e ISO 7218 pueden encontrarse directrices generales).

Conservación y disposición de las muestras
El Laboratorio debe establecer un procedimiento documentado, con períodos definidos, para la conservación y eliminación de muestras. Las muestras deben conservarse hasta que se hayan obtenido los resultados del ensayo, o más tiempo según sea necesario. Cuando las porciones de muestras de ensayo están altamente contaminadas, deben descontaminarse antes de su eliminación.

Eliminación de residuos contaminados
Deben existir procedimientos para reducir al mínimo la posibilidad de contaminación del ambiente donde se realiza el ensayo o los materiales utilizados en el mismo. Esto debe considerarse un aspecto importante de la correcta gestión de un laboratorio y debe respetarse la legislación nacional e internacionales sobre medio ambiente, salud y seguridad (véase también ISO 7218).

Debe existir un procedimiento documentado para la eliminación de los residuos peligrosos (físicos, químicos y biológicos), basados en su naturaleza y riesgo/nivel de toxicidad.

Esto incluye la existencia de instalaciones adecuadas para recoger, almacenar y eliminar los residuos, así como su descontaminación y transporte. Debe existir un número adecuado de recipientes debidamente rotulados, a prueba de fugas con estricto ajuste de tapas y bolsas desechables, que deberán ser colocados estratégicamente en todo el Laboratorio. La zona de almacenamiento de residuos debe ser marcada y mantenerse libre de plagas hasta su disposición final.

Aseguramiento de la calidad
Como parte de su sistema de calidad, el Laboratorio debe documentar e implementar, para todos los ensayos incluidos en el alcance de la acreditación, un programa de aseguramiento de la calidad, tanto interno como externo, que asegure y demuestre que los ensayos se encuentran bajo control y que proporcionan resultados válidos y confiables. El programa debe incluir los controles a realizar, su frecuencia, los criterios de aceptación y las acciones a tomar cuando, los resultados de dichos controles, se encuentren fuera de los criterios especificados.

El documento CE-LE-06 “Criterios específicos para la evaluación y acreditación de Laboratorios que llevan a cabo ensayos microbiológicos” describe las particularidades vinculadas a los controles internos y externos de calidad. Ese documento puede descargarse de www.oaa.org.ar.

Para mayor información:
OAATeléfono: (54-11) 4349 3962/3/4
info@oaa.org.ar
www.oaa.org.ar

La Seguridad en los Laboratorios Químicos ♦ 2ª Parte Europa Audiovisual

La Seguridad en los Laboratorios Químicos ♦ 2ª Parte

Ver también: 1ª Parte

Nota: Año de la segunda edición: 2001.
Atención: puede que la normativa aquí citada no esté actualizada.

Fuente: GECSL

La Seguridad en los Laboratorios Químicos ♦ 1ª Parte Europa Audiovisual

La Seguridad en los Laboratorios Químicos - 1ª Parte - Avibert

Nota: Año de la segunda edición: 2001.
Atención: puede que la normativa aquí citada ya no esté actualizada.


Fuente: GECSL

Métodos Alternativos para el Control de Calidad Inocuidad Alimentaria

Hoy en día la industria cuenta con tecnología que le permite garantizar la sanidad de los alimentos en menos tiempo, ofreciendo al consumidor mayor seguridad. La elección de la misma se basa en la sencillez, confianza, rapidez y conveniencia que aporta a los procesos.

En general, los métodos tradicionalmente utilizados para llevar a cabo este tipo de análisis son laboriosos y los resultados no se obtienen rápidamente. Es por ello que ha sido necesario desarrollar nuevas alternativas con características de desempeño adecuadas a las necesidades de la industria de alimentos. Resultados confiables en tiempos más cortos.

El conocimiento y aprovechamiento de estas nuevas opciones permiten garantizar la calidad de los productos de manera sencilla y productiva, minimizar riesgos de salud para los consumidores y mantener la confiabilidad de las empresas en el mercado.

PRUEBAS MICROBIOLOGICAS RÁPIDAS

Las pruebas microbiológicas rápidas actualmente desarrolladas ofrecen detección, identificación o enumeración de microorganismos en tiempos más cortos y llevando a cabo metodologías mucho más sencillas, comparadas con las tradicionalmente utilizadas. Con este tipo de tecnologías es posible optimizar los recursos disponibles ya que estas requieren mucho menos material de laboratorio y menos número de personal técnico, lo que da como resultado mayor productividad.

Es importante señalar que aún se contemplan algunas restricciones en cuanto al análisis microbiológico rápido, las cuales siguen siendo un obstáculo para el empleo y optimización de este tipo de tecnologías.

Las pruebas rápidas que hasta ahora se han desarrollado se han basado en métodos bioquímicos y enzimáticos, reducción de colorantes, reconocimiento de anticuerpos y ácido nucleico, y filtración por membrana e impedancia.

ENUMERACIÓN DE MICROORGANISMOS INDICADORES

Las principales pruebas microbiológicas que se llevan a cabo de manera rutinaria en la industria de alimentos, incluyendo la enumeración de microorganismos indicadores ofrecen resultados en cuanto a la calidad de una materia prima, frescura de un producto, eficiencia de procesos, estimación de la vida de anaquel, contaminaciones post-producción, prácticas de higiene y manejo de las condiciones de operación durante la distribución.

Entre los principales grupos de microorganismos indicadores de mayor aplicación en alimentos, se encuentran las bacterias aerobias mesófilas, organismos coliformes, E.coli, hongos y levaduras, y enterobacterias.

PRUEBAS RÁPIDAS PARA LA ENUMERACIÓN DE MICROORGANISMOS INDICADORES: PETRIFILM

Algunas pruebas rápidas para indicadores incorporan medios selectivos y agentes diferenciales que permiten una rápida identificación de los microorganismos. Uno de los métodos rápidos convenientes es el de Petrifilm. Es un sistema de doble película con medio de cultivo listo para utilizarse, un agente gelificante soluble en frío y un indicador de color (TTC) que facilita la enumeración de las colonias.

Las características de conveniencia de estos métodos incluyen:
  • Eliminar la preparación de medios y variabilidad entre técnicos
  • Reducir requerimientos de espacio así como necesidades de equipos: autoclave, baño de agua, incubadoras, mesas de trabajo, campanas de flujo laminar y material de vidrio
  • Disminuir el consumo de energía
  • Estandarizar los resultados con métodos validados internacionalmente
  • Reducir costo de desechos e impacto ambiental
La metodología de la prueba se lleva a cabo mediante la inoculación de la muestra, incubación e interpretación de resultados. Los tiempos y temperaturas de incubación varían de acuerdo al microorganismo de interés, siendo en ocasiones mucho más rápido que los métodos de recuento tradicionales.

DETECCIÓN DE MICROORGANISMOS PATÓGENOS

Uno de los objetivos de la industria alimentaria es garantizar la inocuidad de los alimentos que produce, de manera que estos no presenten ningún riesgo para la salud del consumidor. En el grupo de microorganismos patógenos se incluyen aquellos que tienen la capacidad de causar enfermedades por el consumo de alimentos contaminados con dichos microorganismos o toxinas microbianas. Por tal motivo, cada alimento debe ser cuidadosamente evaluado para determinar que tipo de microorganismos patógenos pueden presentarse como un riesgo, los niveles de contaminación que podrían existir inicialmente, la habilidad del microorganismo para sobrevivir en el alimento, el segmento de la población a quien está dirigido el producto y los efectos de las condiciones bajo cuales el alimento estará expuesto durante su almacenamiento y distribución.

Entre los principales microorganismos patógenos que deben ser monitoreados en alimentos se encuentran: Salmonella spp, Listeria monocytogenes, E.coli, Staphylococcus aureus/toxina y Campylobacter spp.

PRUEBAS RÁPIDAS PARA LA DETECCIÓN DE MICROORGANISMOS PATÓGENOS: TECRA-INMUNOENSAYOS ENZIMÁTICOS

Uno de los métodos más utilizados para el análisis de patógenos en alimentos son los inmunoensayos, que están basados en el uso de anticuerpos para detectar la presencia del microorganismo objetivo.

La prueba se lleva a cabo al poner en contacto la muestra con los anticuerpos específicos. Si el microorganismo está presente, el antígeno se unirá al anticuerpo específico. Posteriormente se adiciona un segundo anticuerpo marcado con una enzima, intercalando pasos de incubación y lavado. La prueba es finalmente interpretada con la adición de un cromógeno que permitirá detectar el resultado, ya sea visualmente o con el uso de un espectrofotómetro.

Este tipo de sistemas permite tanto la detección de bacterias patogénicas como de toxinas en muestras pre-enriquecidas de alimentos, con una sensibilidad 1-5 ufc/25 g de muestra y una especificidad de 95-99%, lo cual ofrece resultados en tiempos más cortos que los métodos tradicionales.

VALIDACIÓN DE HIGIENE: LUMINOMETRO CLEAN – TRACE

Una de las medidas más efectivas para reducir los niveles de contaminación en el producto terminado consiste en llevar a cabo un sistema y control efectivo de la limpieza. Un método de prueba adecuado para dicho control es la verificación de la higiene previa al inicio de la producción, para obtener resultados rápidamente que permitan tomar acciones correctivas inmediatas y así mejorar la calidad de los productos.

La prueba está basada en una reacción de bioluminiscencia con el Adenosín Trifosfato (ATP), una molécula que se encuentra presente en todas las células vivas, almacena y transporta energía intracelular y forma parte estructural del RNA y la enzima luciferin-leciferasa, generando luz, la cual es medida utilizando un luminómetro que reporta los resultados en unidades relativas de luz (URL). La cantidad de URLs es directamente proporcional a la cantidad de ATP.

Es fácil de utilizar, sólo hay que insertar el hisopo, cerrar la cámara y medir.

* Guadalupe Mondragón Herrera, Especialista del departamento Técnico de la División de 3M Food Safety.

REPETIBILIDAD DE LOS SISTEMAS DE MONITOREO DE HIGIENE

Existen pocos estudios que evalúen de manera objetiva los sistemas de monitoreo de higiene que miden el adenosin 5´-trifosfato (ATP). Dos de los parámetros más importantes en el desempeño de estos sistemas son la reproducibilidad (variación en la medición atribuible al usuario) y la repetibilidad (variación en la medición atribuible al sistema: equipo y dispositivos.

Una repetibilidad baja puede deberse a diversos factores, como variabilidad en el proceso de fabricación de hisopos, almacenamiento inadecuado o inconsistencia en las medidas que toma el instrumento. El riesgo que esto implica es que se pueden obtener falsos positivos durante la evaluación de puntos críticos de control, generando repetición de limpiezas innecesarias de los equipos. Los falsos negativos, por otro lado, pueden poner al producto y al consumidor en riesgo.

Para evaluar la confiabilidad de los sistemas de monitoreo de higiene, la empresa británica Cara Technology realizó dos estudios independientes. En el primero comparó el desempeño de dos luminómetros de tecnologías diferentes respecto a su sensibilidad para detectar residuos de alimentos y organismos vivos. El segundo estudio* (que se presenta a continuación) evaluó la repetibilidad en los resultados de cuatro sistemas similares con respecto a la medición de cantidades bajas de adenosin 5´-trifosfato (ATP). Las conclusiones de ambos estudios demostraron que el sistema 3M® Clean-Trace presenta la mejor sensibilidad para detectar residuos de alimentos y organismos vivos y la mejor repetibilidad frente a los productos similares en el mercado.

Luminómetro 3M® NG Clean-Trace
Es el luminómetro más avanzado del mercado y el más sencillo de utilizar. Con sólo 400 g de peso es extremadamente portátil y ligero. Su base de trabajo opcional (Docking Station) ofrece una conexión instantánea y simultánea a la PC y al cargador de batería, siendo el sistema más moderno en conexión para cargar e imprimir.

El luminómetro 3M® NG Clean-Trace® almacena información que puede ser transferida a la PC con el programa Biotrack®+. También tiene la capacidad de repetir la medición, facilitando la continuidad y flexibilidad para el almacenamiento y análisis de datos.

El sistema ofrece:
  • Crear sus propios planes de muestreo
  • Registrar los datos de las pruebas y enviarlos a la PC
  • Crear e imprimir gráficos de análisis de datos para informes
  • Validar los procesos de higiene para una fácil identificación de áreas problemáticas
El luminómetro 3M® NG Clean-Trace® se usa con reactivos Biotrace (como Clean-Trace®, Aqua-Trace® ). Mide la cantidad de ATP de una muestra en 30´.

Es fácil de utilizar, sólo hay que insertar el hisopo, cerrar la cámara y medir. Los resultados numéricos se expresan en Unidades Relativas de Luz (URLs).

Protocolo
Se compararon cuatro tipos de luminómetros e hisopos, en estricta concordancia con las instrucciones de cada fabricante. Se evaluaron 50 hisopos de cada tipo con agua libre de ATP (20 muestras/marca dispositivo) y con una solución de ATP 1nM (10fMol) (30 muestras/marca dispositivo). Se cuidaron aspectos como la temperatura del hisopo, efectos de tiempo dependiente, rotación de los hisopos y volúmenes de la muestra añadida (10uL).

Resultados
Dado que la luz se mide en “Unidades Relativas de Luz (URL)”, las respuestas difieren de sistema a sistema. Como puede apreciarse en el coeficiente de variación de la siguiente tabla, Clean-Trace fue, con mucho, el sistema más repetible.Conclusiones
Debido a que los resultados de los sistemas de monitoreo de higiene se utilizan para correr procesos de control estadístico y para construir gráficas de tendencias o de control, la repetibilidad en los resultados es necesaria para que los datos sean confiables y representativos de la realidad en las plantas.

Simultáneamente, es importante evaluar los sistemas de monitoreo de higiene usando microorganismos y residuos de alimentos comúnmente encontrados, ya que compararlos contra soluciones de ATP no brinda toda la información de la confiabilidad del sistema.

Los estudios independientes de Cara Technology demostraron que el sistema Clean-Trace de 3M reportó una mejor sensibilidad para detectar microorganismos y residuos de alimentos, y que puede considerarse el de mejor repetibilidad, al presentar el menor coeficiente de variación (7.4%) frente a los productos similares de la competencia.

3M™ MLS
El 3M™ MLS (Sistema de Luminiscencia Microbial) proporciona una alternativa rápida para, la evaluación microbiológica tradicional de tratamientos de ultra alta temperatura (UAT) y la prolongación de la vida útil de los productos. Basado en la tecnología de la bioluminiscencia de ATP, el 3M™ MLS permite la liberación de producto 48 horas antes que los métodos tradicionales, reduciendo así el almacenamiento en stock. Después de la incubación de la muestra y un breve tiempo de ensayo de 27 minutos, el 3M™ MLS proporciona una visualización de los resultados en la pantalla de la PC a medida que se van generando, sin necesidad de esperar el resultado completo de las 96 celdas. La precisión, la sensibilidad, flexibilidad y fiabilidad del 3M™ MLS hace que sea ideal como sistema de alto rendimiento para la detección microbiológica del producto final en la industria láctea, así como otras industrias que fabrican productos estériles.

Beneficios claves:
  • Resultados disponibles al menos 48 horas antes que en los método tradicional
  • Reduce el almacenamiento en stock
  • Ahorro de tiempo
  • Cumple con las exigencias de su programa de control de calidad
  • Permite un rendimiento de calidad para realizar un seguimiento a través del tiempo
Una solución para…
El 3M™ MLS ofrece una rápida solución de detección microbiológica de los siguientes productos estériles:
  • Ultra Alta Temperatura (UAT) y Vida de Anaquel extendida
  • Productos lácteos estériles
Reactivos de detección de productos lácteos UAT
Los reactivos están diseñados específicamente para facilitar la verificación del análisis microbiológico de los productos terminados, con tecnología de la bioluminiscencia de ATP. Los reactivos están diseñados para medir el ATP a partir de células microbianas, excluyendo otras posibles fuentes.

Reactivo Control
El Reactivo Control es una prueba fiable para verificar la correcta ejecución de sus reactivos. Garantiza que sus reactivos y el instrumento están siendo utilizados y almacenados correctamente antes de iniciar las pruebas, estos ensayos garantizan resultados fiables en todo momento.

Software del 3M™ MLS
• El 3M™ MLS puede ser utilizado con el software de presentación de informes sofisticados, para presentar informes de gran alcance. Con la presentación de informes resumidos y reportes detallados, este completo sistema permite un rendimiento de calidad para realizar un seguimiento a través del tiempo

INSTRUCCIONES
  1. Incubar la muestra durante un mínimode 48 horas y luego pipetee la muestra en los pocillos.
  2. Colocar la bandeja de pocillos con las muestras en el instrumento 3M™ MLS.3- Iniciar el ensayo. El estado de resultados se muestra en un formato visual de códigos de color:Verde (pasa), Amarillo (precaución) y Rojo (falla).


Referencia:
W.J. Simpson, C.J. Giles y H.A. Flockhart. “Repetibilidad de los sistemas de evaluación de higiene en mediciones de niveles bajos de ATP,” Cara Technology Limited, Reporte No. 30606, julio de 2006.



Para Mayor Información:
CHEMICAL CENTER
info@chemicalcenter.com.ar
www.chemicalcenter.com.ar

Desinfección térmica de superficies Estudio realizado por Antimicrobial Test Laboratory (Texas, EEUU)

Un estudio realizado por el laboratorio Antimicrobial Test Laboratory (Texas, EEUU) se propuso determinar la capacidad de matar microorganismos de un sistema de desinfección basado en vaho de vapor saturado, que reduce el riesgo de infecciones transmitidas por superficies contaminadas y puede servir como alternativa a los desinfectantes químicos.

Desinfección térmica de superficies
La transmisión de enfermedades infecciosas a través de superficies contaminadas es un problema presente en ámbitos como hospitales, escuelas o instalaciones donde se procesen alimentos.

Los desinfectantes químicos se utilizan frecuentemente para reducir la contaminación pero muchos plantean importantes riesgos para los seres humanos, el medio ambiente o las superfícies y deben ser aplicados de acuerdo a una estrictas instrucciones de uso.

Una alternativa podría ser la desinfección térmica, aplicando calor húmedo en forma de vapor saturado directamente a las superficies contaminadas. El vapor saturado tiene una humedad relativamente baja, temperatura alta y partículas más pequeñas que el vapor de limpieza normal.

El calor aplicado a las superficies es extraordinariamente germicida y tiene la ventaja de ser un método de desinfección libre de productos químicos.

Cuestión de segundos

Según la investigación realizada por el laboratorio Antimicrobial Test Laboratory y publicada en el American Journal of Infection Control, el sistema de desinfección por vapor saturado es de rápida eficacia y de amplio campo de aplicación, por lo que representa un nueva alternativa a los desinfectantes químicos líquidos.

Para realizar el estudio, los investigadores colocaron altas concentraciones de Escherichia coli, Shigella flexneri, vancomycin-resistant Enterococcus faecalis (VRE), methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA), Salmonella enterica, methicillin-sensitive Staphylococcus aureus, MS2 coliphage, Candida albicans, Aspergillus niger y Clostridium difficile sobre superficies porosas.

Las superficies fueron tratadas con vaho de vapor saturado por períodos breve, determinando el número de microorganismos supervivientes.

Diversos microorganismos patógenos murieron rápidamente, el total de los microorganismos investigados quedaron completamente inactivados en 5 segundos. El riesgo de infección decrece rápidamente al incrementar el período de tratamiento con vapor saturado.

Ventajas de la desinfección térmica

Benjamin Tanner, profesor de microbiologia e immunologia en la Universidad de Arizona y presidente de Antimicrobial Test laboratories, expone en un artículo las ventajas de este método de desinfección:
:: El vapor y la energia calorífica penetran en las irregularidades más diminutas de las superficies, proporcionando un tratamiento más efectivo que la aplicación de químicos.
:: La desinfección por vapor saturado tiene lugar en segundos mientras que los desinfectantes químicos necesitan, en general, entre 5 y 10 minutos. Según tests realizados, los tiempos de desinfección por vapor serían:


:: La velocidad de desinfección observada se deriva de la acción del calor sobre las proteínas que componen todos los microorganismos así como los componentes grasos de bacterias y hongos.

Las proteínas son los componentes estructurales de cualquier célula. Para los virus, las proteínas son claves para poder unirse a las células "huésped". Cuando la temperatura de las proteínas microbianas aumenta, se rompen o desnaturalizan. Una vez desnaturalizada, la proteína debe ser reemplazada. Cuando muchas proteínas son desnaturalizadas a la vez, el microorganismo no puede superar el daño y muere. Además del daño producido por el calor sobre las proteína, que afecta a todo microorganismo, el calor afecta también a los componentes grasos presentes en las bacterias y los hongos, fundiéndolos.

:: La desinfección por vapor saturado es efectiva sobre un amplio espectro de patógenos (bacterias, virus, hongos) frente a la limitación de determinados productos químicos, que actúan especificamente sobre determinados microorganismos pero no afectan a otros.

:: La superficie de contacto de la herramienta desinfectante en el sistema por vapor permanece siempre muy caliente, por lo que se reduce el riesgo de contaminación cruzada entre superficies o estancias.

:: El calor se disipa rápidamente de la superfície una vez tratada, no dejando ningún residuo tóxico como podría suceder con desinfectantes químicos.


La referencia a este artículo es:
FUTURE CLEANING SRL
info@futurecleaning.com.ar
www.futurecleaning.com.ar