Electrodeposition of Si, Ti, and W A New Concept of Molten Salt Systems

Abstracts

This Account describes the results of the electrodeposition of film-like Si, Ti, and W by utilizing molten salts selected based on a new concept. The proposed molten salt systems, KF–KCl and CsF–CsCl, have high fluoride ion concentrations, relatively low operating temperatures, and high solubility in water.

First, KF–KCl molten salt was used for the electrodeposition of crystalline Si films to establish a new fabrication method for Si solar cell substrates. The electrodeposition of Si films from the molten salt at 923 and 1023 K was successfully achieved using K2SiF6 or SiCl4 as the Si ion source. The crystal grain size of Si was larger at higher temperatures, indicating that higher temperatures are advantageous for the application of Si solar cell substrates. The resulting Si films underwent photoelectrochemical reactions. Second, the electrodeposition of Ti films using the KF–KCl molten salt was investigated to easily impart the properties of Ti, such as high corrosion resistance and biocompatibility, to various substrates. Ti films with a smooth surface were obtained from the molten salt containing Ti(III) ions at 923 K. Electrochemical tests in artificial seawater revealed that the electrodeposited Ti films had no voids and cracks and that the obtained Ti-coated Ni plate had a high corrosion resistance against seawater. Finally, the molten salts were used for the electrodeposition of W films, which are expected to be used as diverter materials for nuclear fusion. Although the electrodeposition of W films was successful in the KF–KCl–WO3 molten salt at 923 K, the surface of the films was rough. Therefore, we used the CsF–CsCl–WO3 molten salt, which can be employed at lower temperatures than KF–KCl–WO3. We then successfully electrodeposited W films with a mirror-like surface at 773 K. Such a mirror-like metal film deposition has not been reported before using high-temperature molten salts. Further, the temperature dependence of the crystal phase of W was revealed by the electrodeposition of W films at 773–923 K. β-W was obtained at 773 and 823 K, α-W was obtained at 923 K, and a mixed phase of α- and β-W was obtained at 873 K. In addition, single-phase β-W films with a thickness of approximately 30 μm were electrodeposited, which has not been reported before.

The results show that our proposed molten salt systems are advantageous for electroplating Si, Ti, and W. Our approach is also expected to be applicable for the electrodeposition of other metals such as Zr, Nb, Mo, Hf, and Ta.

A New Concept of Molten Salt Systems for the Electrodeposition of Si, Ti, and W
Yutaro Norikawa and Toshiyuki Nohira
Accounts of Chemical Research Article ASAP
DOI: 10.1021/acs.accounts.2c00855

Source: ACS Publications

Revit Tutorial para principiantes

Revit es un software para BIM utilizado ampliamente por arquitectos, ingenieros y contratistas a fin de crear un modelo unificado que puedan aprovechar todas las disciplinas y los sectores para completar su trabajo. Autodesk Revit se ha creado para impulsar BIM, no para sustituirlo

Fuente: argMANES

Stretchy Film for Distinguishing Sugars Gorgeous rainbow-colored

Clic en la imagen

Rainbows and sugar may conjure up images of a certain leprechaun-branded breakfast cereal. But now, researchers in ACS Nano report a kaleidoscope-like film for telling different sweeteners apart. The material displayed multiple colors when stretched by hand. But when evenly stretched, it enhanced the unique shifts in fluorescence intensity of 14 sugars, distinguishing between them in beverages and sweat samples.

Fuente: American Chemical Society

HPLC - Fundamentos Fase normal y Fase reversa

Clic en la imagen

Se describe la parte fundamental de la cromatografía que dio origen a la instrumentación. También se explican las características de las llamadas fase normal y fase reversa.

Fuente: AnaliQuim

¿Con o sin azúcar? Las ignoradas glicoproteínas procariotasMaría Julia Pettinari

María Julia Pettinari
Departamento de Química Biológica. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. IQUIBICEN. CONICET. Buenos Aires. Argentina

Las glicoproteínas tienen un origen temprano en la evolución y se encuentran en todos los grupos de organismos, tanto eucariotas como procariotas, lo que refleja su rol esencial en múltiples procesos.

Se conocen proteínas glicosiladas en procariotas desde hace muchos años, y hay numerosos trabajos que indican que tanto en bacterias como en arqueas hay diferentes mecanismos de glicosilación de diferentes proteínas. Sin embargo, esto es ignorado por una parte muy importante de la comunidad científica, para quienes la capacidad de glicosilar proteínas es una característica exclusiva de las células eucariotas. En la primera década de este milenio aparecieron muchos trabajos científicos intentando corregir este error. Algunos de estos trabajos tienen nombres muy sugestivos, como “Nunca más digas nunca” (Neversayneveragain)[1], que reflejan cuán extendida estáaúnentre investigadores de diferentes áreas la noción de que la glicosilación es una característica exclusiva de los eucariotas.

Desde mediados del siglo XX se han estudiado las diversas modificaciones que sufren las proteínas durante su traducción o una vez que han sido traducidas. Estas modificaciones pueden ser de diferentes tipos, y las más comunes involucran el agregado de diferentes grupos químicos. La adición de grupos fosfato (fosforilación) es la modificación más frecuente, y le siguen la acetilación y la glicosilación. Estas y otras modificaciones aumentan enormemente el repertorio de variedades proteicas, ya que expanden la diversidad de grupos funcionales mucho más allá de las cadenas laterales de los aminoácidos, y son esenciales para un gran número de funciones. Por este motivo los tipos de glicosilación y los mecanismos mediante los cuales ocurren han sido objeto de numerosos estudios. La glicosilación proteica tiene su lugar en todos los libros de texto de Bioquimica, en la gran mayoría de los cuales se describe como un proceso que ocurre en el retículo endoplasmático o aparato de Golgi. Quizá sea este uno de los motivos por los cuales se ha asociado este tipo de modificación proteica exclusivamente a las células eucariotas, ya que entre otras diferencias [2], los procariotas.no tienen retículo endoplasmático.

A partir de los estudios que llevaron a la producción de la insulina, la primera proteína humana recombinante producida en bacterias en 1983, se desarrollaron métodos para producir muchas otras proteínas en microorganismos. Muchas de las proteínas de interés, sobre todo para la industria farmacéutica, deben ser glicosiladas para poder ser funcionales. Durante mucho tiempo la mayoría de los investigadores que trabajaban con estas proteínas pensaban que las bacterias, normalmente usadas para la producción de diferentes bioproductos, no eran adecuadas para la síntesis de glicoproteínas porque no tenían la capacidad de realizar estas complicadas modificaciones, propias de las organelas eucariotas. La realidad es que los procariotas tienen sistemas de glicosilación al igual que los eucariotas, aunque las diferencias entre ellos hacen que las proteínas eucariotas no sean glicosiladas correctamente al ser expresadas en sistemas procariotas.

La primera proteína glicosilada procariota fue descripta en un miembro del dominio Archaea en 1974 [3], y un par de años después se publicó un trabajo describiendo proteínas glicosiladas en la envoltura de bacterias [4] (Figura 1). Esto demostró que las proteínas glicosiladas están ampliamente distribuidas entre todos los grupos de organismos, ya que se encuentran en todos los dominios. La mayoría de los estudios de glicosilación en bacteriasse centraron en el análisis de los sistemas de glicosilación en bacterias patógenas, demostrando que estas modificaciones son sumamente importantes en los procesos patogénicos, dado queintervienen en los procesos de adhesión, invasión y evasión de la respuesta inmune del hospedador [5]. Es más, las bacterias no sólo glicosilan muchas de sus propias proteínas, sino que también pueden glicosilar proteínas eucariotas como parte de las estrategias de los patógenos para infectar al hospedador [6]. La importancia de la glicosilación en las interacciones de los microorganismos con el hombre también se ha demostrado en el caso de bacterias benéficas, como en el principal simbionte intestinal [7], y en muchas bacterias y arqueas de vida libre [8].

Es sorprendente que a pesar de que hace mucho ya que se conoce la abundancia y diversidad de las reacciones de glicosilación que realizan los procariotas, hay muchos investigadores, aun entre aquellos especializados en el estudio de glicoproteínas eucariotas, que siguen pensando (y enseñando) que la glicosilación es una modificación exclusiva de las células eucariotas.

Hoy en día sabemos que hay muchísimas bacterias en nuestro cuerpo, y cada vez se hace más evidente la influencia que tienen sobre diferentes aspectos de nuestra fisiología y su importancia para nuestra salud. A partir de los estudios que muestran la relevancia de la glicosilación bacteriana en la interacción con las células eucariotas, y en particular humanas, sería de esperar que ya nadie pusiera en duda la capacidad de los procariotas de realizar este tipo de modificación proteica.

Referencias:
1- Benz I, Schmidt MA (2002) Never say never again: protein glycosylation in pathogenic bacteria. Molecular Microbiology 45(2) : 267-276.
2- Pettinari MJ (2010) Las bacterias y nosotros, tan diferentes... y tan parecidos. Mitos y verdades de las diferencias entre eucariotas y procariotas. Química Viva, 9(1),3-11.
3- Mescher MF, Strominger JL, Watson SW (1974). Protein and carbohydrate composition of the cell envelope of Halobacteriumsalinarium. Journal of Bacteriology 120(2): 945-954.
4- Sleytr UB, Thorne KJI (1976). Chemical characterization of the regularly arranged surface layers of Clostridium thermosaccharolyticumand Clostridium thermohydrosulfuricum. Journal of Bacteriology 126:377–83.
5- Poole J, Day CJ, von Itzstein M, Paton JC, Jennings, MP (2018). Glycointeractions in bacterial pathogenesis. Nature Reviews Microbiology 16(7): 440-452.
6- Wang Z, McCloskey A, Cheng S, Wu M, Xue C, Yu Z, Liu X (2018). Regulation of the small GTPase Rab1 function by a bacterial glucosyltransferase. Cell Discovery 4(1): 53.
7- Fletcher CM et al. (2009) A general O-glycosylation system important to the physiology of a major human intestinal symbiont. Cell 137: 321–331
8- Eichler J, Koomey M (2017). Sweet new roles for protein glycosylation in prokaryotes. Trends in Microbiology 25(8), 662-672.

	Revista QuímicaViva
ISSN 1666-7948 www.quimicaviva.qb.fcen.uba.ar	Número 3, año 18, Diciembre 2019 quimicaviva@qb.fcen.uba.ar